LAPORAN HASIL PRAKTIKUM

PERKAKAS PENDUKUNG II

(MENGUKUR KADAR AIR DENGAN OVEN, STERILISASI DAN METODE ASEPTIK, PROSES FERMENTASI, ALAT-ALAT BEDAH, STUDI KOMUNITAS, DAN PERANGKAP JEBAK)

DOSEN PEMBIMBING : MELLISA S.Pd, M.Pd

DISUSUN OLEH :

NAMA : RANTI AMELINA
NPM : 116512087
KELAS : 4 D

PROGRAM STUDI PENDIDIKAN BIOLOGI

FAKULTAS KEGURUAN ILMU PENDIDIKAN

UNIVERSITAS ISLAM RIAU

2013 

PERCOBAAN 1

MENGUKUR KADAR AIR DENGAN MENGGUNAKAN OVEN

 Tujuan : untuk mengetahui cara penggunaan alat-alat pengeringan yang digunakan antara lain untuk menentukan kadar air.

 Dasar Teori

Pengeringan biasanya dipakai untuk menentukan kadar air, atau dilakukan pada zat kimia padat yang akan ditimbang untuk standarisasi, membuat reagensia dan lain-lain. Alat yang digunakan adalah oven yang dilengkapi dengan thermometer, thermostats dan pengatur waktu pengeringan yang dikehendaki. Alat yang dipakai sebagai wadah bahan atau kemikalia yang akan ditimbang harus juga dikeringkan. Alat yang digunakan untuk menyimpan bahan yang sudah dikeringkan adalah Desikator yang kedap udara, didalamnya ditaruh zat yang bisa menyerap uap air (silika gel) sehingga pengaruh uap air selama penyimpanan bisa diabaikan.

Kadar air dalam suatu bahan makanan sangat mempengaruhi kualitas dan daya simpan dari bahan pangan tersebut. Apabila kadar air bahan pangan tersebut tidak memenuhi syarat maka bahan pangan tersebut akan mengalami perubahan fisik dan kimiawi yang ditandai dengan tumbuhnya mikroorganisme pada makanan sehingga bahan pangan tersebut tidak layak untuk dikonsumsi.

Penentuan kadar air dari suatu bahan pangan sangat penting agar dalam proses pengolahan maupun pendistribusian mendapat penanganan yang tepat. Penentuan kadar air dalam makanan dapat dilakukan dengan beberapa metode yaitu metode pengeringan (dengan oven biasa), metode destilasi, metode kimia, metode khusus. Metode pengeringan (dengan oven biasa) dilakukan untuk menentukan kadar air dari bahan pangan yang mengandung banyak air dan umumnya stabil terhadap pemanasan tinggi. Produk yang digunakan dapat pula digunakan untuk produk seperti pada metode oven vakum kecuali yang banyak mengandung sukrosa atau glukosa.

Penentuan kadar air suatu bahan pangan digunakan untuk menentukan banyaknya zat gizi yang dikandung oleh bahan pangan tersebut. Dengan memanaskan suatu bahan pangan dengan suhu tertentu maka air dalam bahan pangan tersebut akan menguap dan berat bahan pangan tersebut akan konstan. Berkurangnya berat bahan pangan tersebut berarti banyaknya air yang terkandung dalam bahan pangan tersebut.

Oleh karena itulah dilakukan praktikum penetapan kadar air metode oven biasa supaya dapat memudahkan dalam menentukan presentase zat gizi yang terkandung dalam suatu bahan pangan tepung-tepungan.

Kadar Air

Kadar air merupakan banyaknya air yang terkandung dalam bahan yang dinyatakan dalam satuan persen. Kadar air juga merupakan karakteristik yang sangat penting dalam bahan pangan karena air dapat mempengaruhi penampakan, tekstur, serta ikut menentukan kesegaran dan daya awet bahan pangan tersebut. Kadar air menyebabkan mudahnya bakteri, kapang dan khamir untuk berkembang biak sehingga akan terjadi perubahan pada bahan pangan (Haryanto 1992). Kadar air adalah perbedaan antara berat bahan sebelum dan sesudah dilakukan pemanasan. Setiap bahan bila diletakkan dalam udara terbuka kadar airnya akan mencapai keseimbangan dengan kelembaban udara disekitarnya. Kadar air ini disebut dengan kadar air seimbang.

Kandungan air dalam bahan makanan ikut menentukan acceptability, kesegaran dan daya tahan bahan itu. Selain merupakan bagian dari suatu bahan makanan, air merupakan pencuci yang baik bagi bahan makanan tersebut atau alat-alat yang akan digunakan dalam pengolahannya. Kandungan air dalam bahan makanan mempengaruhi daya tahan bahan makanan terhadap serangan mikroba yang dinyatakan dengan Aw yaitu jumlah air bebas yang dapat digunakan oleh mikroorganisme untuk pertumbuhannya (Winarno 2004).

Penetapan kandungan air dapat dilakukan dengan beberapa cara. Hal ini tergantung pada sifat bahannya. Pada umumnya penentuan kadar air dilakukan dengan mengeringkan bahan dalam oven pada suhu 105 – 110 °C selama 3 jam atau sampai didapat berat yang konstan. Untuk bahan yang tidak tahan panas, seperti bahan berkadar gula tinggi, minyak, daging, kecap dan lain-lain pemanasan dilakukan dalam oven vakum dengan suhu yang lebih rendah. Kdang-kadang pengeringan dilakukan tanpa pemanasan, bahan dimasukkan ke dalam eksikator dengan H2SO4 pekat sebagai pengering, hingga mencapai berat yang konstan (Winarno 2004).

Cara mengeringkan dengan oven

Pemanasan dengan oven biasanya digunakan untuk menghilangkan kandungan air pada penentuan kadar air. Setelah endapan dipisahkan dengan cara dekantir, endapan dimasukkan ke dalam krus porselinyang sudah diketahui massa porselinnya. Kemudian krus porselin yang berisi endapan ditimbang. Setelah endapan dimasukkan ke dalam krus porselin dimasukkan ke dalam oven.

Oven dinyalakan dengan diatur pada temperatur tertentu. Untuk penentuan kadar air biasanya temperatur dipasang pada suhu di antara 70-800C. setelah beberapa saat kemudianporselin ditimbang dan dicatat massanya. Kemudian krus porselin dimasukkan kedalam oven, setelah beberapa saat kemudian krus porselin ditimbang lagi dan dicatat hasilnya. Demikian seterusnya sampai didapatkan massa krus yang konstan.

Cara mengeringkan dengan desikator

Desikator digunakan untuk mengeringkan senyawa yang bersifat higroskopis (menyerap uap air). Senyawa padat atau kristal yang akan dikeringkan dimasukkan kedalam desikator dengan menggunakan wadah yang sesuai, misalnya gelas, kaca arloji, atau krus porselin. Kemudian didalam dasar desikator diberikan senyawa yang bersifat higroskopis yang paling sering digunakan adalah silika gel, lalu desikator ditutup rapat. Proses pengeringan dengan desikator dapat memerlukan waktu hingga 2-3 hari. Desikator digunakan untuk menyimpan senyawa-senyawa yang mudah rusak karena menyerap uap air.

 

 Alat dan bahan : 

a. Oven

b. Desikator

c. Krus porselin

d. Sendok takar/spatula

e. Timbangan

f. Pisang goreng

g. Pasir

h. Daun

 Cara kerja :

1. Siapkan timbangan dan dinolkan

2. Timbang krus porselin beserta tutupnya dan masukkan bahan kedalam krus porselin dan liat hasilnya

3. Setelah itu masukkan krus porselin dan bahan yang telah ditimbang tadi kedalam oven antara suhu 70-80 0C

4. Tunggu selama 30 menit

5. Ssetelah 30 menit keluarkan krus porselin beserta isinya

6. Masukkan kedalam desikator selama 15 menit yang telah diberikan silika gel

7. Setelah itu timbang kembali dan liat hasilnya

Perhitungan : berat awal – berat akhir X 100%

Berat awal 

 

 Hasil Pengamatan

- Suhu awal = 33,5 0C

- Suhu akhir = 400C

1. Pada Pisang

  

Berat pada krus porselin besar = 48,43gr

Berat krus porselin + pisang =78,73 gr

Berat akhir (setelah pengeringan) = 78.70gr

Suhu awal = 33,50C dan suhu akhir = 400C

Perhitungan = berat awal – berat akhir X 100%

Berat awal 

= 78,73gr - 78,70gr x 100%

78,73 gr

= 0,00050

2. Pada Daun

Berat pada krus porselin kecil = 31,7gr

Berat krus porselin + daun = 40,6gr

Berat akhir = 40,4gr

Suhu awal = 33,5 0C dan suhu akhir = 40 0C

Perhitungan = berat awal – berat akhir X 100%

Berat awal

= 40,6 gr – 40,4 gr x 100 %

40,6 gr

= 0,0049

3. Pada Pasir

Berat pada krus porselin kecil = 32,6gr

Berat krus porselin + pasir = 61,28gr

Berat akhir = 61,23gr

Suhu awal = 33,50C dan suhu akhir = 400C

Perhitungan = berat awal – berat akhir X 100%

Berat awal

= 61,28gr – 61,23gr x 100%

61,28gr

= 0,0008

 

 Kesimpulan

Jadi, dari hasil praktikum yang kami lakukan bersama kelompok dalam percobaan menggukur kadar air dengan menggunakan oven yaitu : bahwa yang paling banyak mengandung air dari ketiga sampel bahan adalah pisang dan pasir, karena bahan sampel menjadi berkurang setelah penggeringan dengan oven. 

 

PERCOBAAN 2

STERILISASI DAN METODE ASEPTIK

 Tujuan :

- mahasiswa mampu melakukan sterilisasi peralatan dan medium yang digunakan.

- Mengembangkan keterampilan memindahkan kultur secara aseptik

 Dasar teori

Sterilisasi didefinisikan sebagai destruksi atau penghalangan mikroba yang hidup. Objek yang terbatas dalam kehidupan mikroba disebut steril.

Sterilisasi sangat penting dilaboratorium mikrobiologi karena pada umumnya percobaan dilakukan menggunakan kultur murni. Bekerja dengan kultur murni memerlukan beberapa persyaratan yaitu, media nutrient serta tempat untuk pertumbuhan harus steril, demikian pula dengan peralatannya.

Mikroba yang dijadikan indikator dalam sterilisasi adalah mikroba yang paling tahan. Jenis mikroba yang digunakan adalah bakteri penghasil endospora seperti Bacillus dan Clostridium yang paling resisten terhadap panas. Spora bakteri ini ampu bertahan pada air mendidih beberapa jam, pengeringan, degradasi enzim, bahan kimia, toksol, dan radiasi.

Ada beberapa metode yang dapat digunakan dalam sterilisasi :

  Sterilisasi dengan panas

Api langsung merupakan sterilisasi paling sederhana yaitu dengan membakar objek yang akan disterilkan pada nyala api. Metode api ini digunakan untuk sterilisasi peralatan seperti jarum ose, spatel, mulut tabung biakan saat memindahkan kultur secara aseptis dan pekerjaan aseptis lainnya.

- Panas kering (oven)

Panas kering ini biasanya digunakan untuk sterilisasi pipet, tabung reaksi, erlenmeyer, gelas piala, dan instrumen kedokteran. Objek yang akan disterilkan ditempatkan pada oven dan dipanaskan sampai seluruh mikroba terbunuh. Panas kering dapat membunuh mikroba karena terjadi oksidasi struktur sel dan makromolekul. Oven tidak dapat digunakan untuk mensterilkan cairan karena umumnya cairan akan mendidih pada temperatur 1000C dan selama mendidih temperatur tidak akan naik. Beberapa spora bakteri tetap dapat bertahan dalam pandidihan selama berjam-jam sehingga pendidihan belum menjamin sterilnya objek tersebut.

- Uap panas (autoklaf)

Sterilisasi dengan alat ini adalah sterilisasi yang paling sering digunakan. Alat ini digunakan untuk sterilisasi medium. Proses sterilisasi dilakukan dalam keadaan tinggi dari uap jenuh. Tekanan yang digunakan biasanya 15 psi (2 atm) pada suhu 1210C selama 15-20 menit. Tekanan waktu yang diperlukan bisa diubah tergantung dari jenis bahan yang akan disterilkan. 

- Tyndalisasi 

Sterilisasi ini digunakan pada temperatur 1000C selama 30-45 menit dan harus diulang sampai 3 kali berturut-turut dengan selang waktu satu hari. Cara ini juga disebut sterilisasi dikontinu atau sterilisasi bertahap. Dandang dapt digunakan sebagai pengganti autoklaf.

  Sterilisasi tanpa panas

- Filtrasi

Cara ini diperlukan jika bahan yang akan disterilkan merupakan larutan yang sensitive terhadap panas dan akan rusak atau terurai pada temperatur tinggi, contoh : antibiotik, asam amino, vitamin, dll. Pada cara ini mikroba tidak dimatikan tapi dihilangkan. Larutan yang akan disterilkan dilewatkan pada filter yang pori-porinya sangat kecil sehingga bakteri tidak bisa lewat. Filter yang dapat digunakan ada beberapa macam tetapi yang sering digunakan adalah filter membran. Sebelum sterilisasi, filter membran dan peralatannya disterilkan terlebih dahulu (biasanya dengan autoklaf)

- Sterilisasi kimia

Sterilisasi kimia adalah metode yang biasa digunakan untuk sterilisasi objek padat yang sensitive terhadap panas. Pada metode ini, mikroba dibunuh menggunakan bahan kimia yang toksik. Oleh karena itu perlu dibedakan antara desinfektan atau aseptik yang biasa digunakan untuk mengontrol mikroba tapi tidak mensterilkan.

- Sterilisasi dengan radiasi

Strerilisasi dengan cara ini khusus digunakan untuk bahan-bahan yang peka terhadap panas. Hal ini disebabkan kenaikan suhu yang terjadi akibat radiasi hanya 40C. radiasi pengion ini memiliki daya tembus besar sehingga bahan yang disterilkan dapat dikemas dengan kemasan apapun. Pada penggunaan radiasi dosis yang digunakan harus tepat. Jika hal ini tidak diperhatikan akan sangat berbahaya karena menyebabkan terjadi mutasi atau resistensi terhadap radiasi. Kelemahan sterilisasi dengan radiasi adalah biaya yang mahal serta operatornya harus menggunakan pelindung.

Alat – alat yang digunakan dalam sterilisasi

o Oven

Oven dipakai pada sterilisasi kering yang digunakan untuk alat – alat gelas. Alat – alat tersebut sebelumnya sudah dibungkus kertas atau kaleng. Oven baik digunakan untuk mensterilkan alat gelas karena tidak menyebabkan adanya kondensasi uap air dalam gelas tersebut.

o Autoklaf

Autoklaf dipakai untuk sterilisasi basah yaitu dengan menggunakan uap panas. Alat ini umumnya untuk sterilisasi larutan, medium, kapas, dll. Autoklaf berupa ketel yang dipenuhi dengan uap bertekanan.

o Waterbath

Waterbath adalah alat yang berfungsi menjaga kestabilan suatu bahan pada suhu tertentu yang dapat menyebabkan kondisi suatu bahan lebih akomodatif.

o Inkubator

Inkubator adalah alat untuk menginkubasi atau memeram mikroba pada suhu yang terkontrol. Alat ini dilengkapi dengan pengatur suhu dan pengatur waktu.

 

METODE ASEPTIK

Metode yang digunakan untuk memelihara kultur murni atau bekerja dengan kultur murni ini disebut metode aseptik. Mikroorganisme dapat dipindahkan dari satu media kultur ke yang lain dengan cara subkultur.

Mikroorganisme terdapat di mana-mana, oleh karena itu mikroorganisme luar yang tidak dikehendaki dapat masuk ke dalam biakan murni melalui aliran udara, kontak tangan yang tercemar, atau melalui tersentuhnya media atau permukaan tabung bagian dalam oleh benda yang belum disterilkan.

Untuk mencegah mikroorganisme luar yang tidak dikehendaki masuk ke dalam biakan murni, perlu digunakan teknik aseptik, dimana semua peralatan maupun media pertumbuhan yang akan digunakan pada teknik ini harus dalam keadaan steril/aseptik.

Ada beberapa metode untuk memindahkan biakan murni dari satu wadah ke wadah yang lain secara aseptik:

 metode streak/gores

 metode spread/sebar

 metode pour plate/cawan tuang

Pada praktikum ini akan dipelajari langkah demi langkah cara memindahkan biakan murni dengan teknik aseptik. Biakan murni adalah biakan yang hanya terdiri dari satu spesies tunggal.

Prosedur umum yang harus diikuti setiap kali bekerja dengan kultur murni adalah :

1. Medium pertumbuhan dan tempatnya harus steril

2. Tempat pertumbuhan harus selalu ditutup untuk memecah masuknya debu yang membawa mikroba. Apabila penutup harus dibuka, harus dalam waktu yang sesingkat mungkin, jangan sekali – kali meletakkan penutup pada sembarang tempat.

3. Peralatan dan larutan yang digunakan untuk pekerjaan harus steril.

4. Area tempat bekerja juga harus dijaga agar tidak terkontaminasi dengan kultur yang digunakan sebelum memulai praktikum terlebih dahulu harus diketahui cara memindahkan sel secara aseptis.

 Alat dan bahan :

 Oven 

 Autoklave

 Waterbath

 Magnetik stirer

 Tabung reaksi

 Cawan petri

 Inkubator

 Jarum ose

 Lemari asam

 Kapas

 Benang

 Kain kasa

 Kertas

 Medium agar nutrisi (NA)

 bakteri

 Pendahuluan :

Pekerjaan dibidang mikrobiologi membutuhkan kondisi steril yang merupakan syarat utama berhasil atau tidaknya pekerjaan. Sterilisasi didefinisikan sebagai dekstruksi atau penghalang mikroba hidup. Bekerja dengan kultur murni memerlukan beberapa persyaratan yaitu media nutrien serta tempat untuk pertumbuhan harus steril, demikian pula peralatannya. Bila kondisi tidak steril maka mikroba kontaminan akan tumbuh dan hasil yang seharusnya diperoleh dari percobaan menggunakan kultur murni akan menyimpang.

 Cara kerja :

A. Sterilisasi alat dengan oven

1. Cucilah alat-alat dengan deterjen 

2. Tiriskan

3. Buat penutup kapas untuk erlenmeyer dan tabung reaksi

4. Bungkuslah cawan petri, tabung reaksi dan erlenmeyer dengan kertas yang telah disediakan 

5. Sterilkan alat-alat gelas tersebut dengan oven atau autoklave

6. Atur tombol pengatur waktu dan temperatur sesuai dengan tujuan sterilisasi (160-180 0C)

7. Setelah sterilisasi tunggu sampai temperatur dalam oven mendekati temperatur ruang, kemudian bukalah oven hati-hati.

B. Sterilisasi dengan autoklave (sterilisasi medium)

1. Isi autoklave dengan air sampai dekat wadahnya

2. Panaskan air

3. Bahan-bahan yang akan disterilkan dimasukkan. Media yang disterilkan dalam erlenmeyer atau tabung reaksi harus ditutup rapat dengan kapas atau alumunium foil.

4. Tutup autoklave dan kencangkan ulir penutupnya

5. Stel waktu yang diinginkan untuk sterilisasi (15 menit)

6. Teka tombol untuk menghidupkan 

7. Jika uap air mulai keluar, tutup kran pengeluaran air. Tekanan uap dalam autoklave akan naik sampai 2 Atm dan temperatur akan mencapai 121 0C

8. Jika waktu sterilisasi sudah dicapai, tekanan dalam autoklave akan turun perlahan dan tunggu sampai tekanan menunjukkan angka nol atau tunggu sampai dingin.

9. Buka tutup autoklave hati-hati dan keluarkan bahan-bahan yang sudah disterilkan

C. Sterilisasi dengan tyndalisasi (Waterbath)

1. Isi waterbath dengan air sampai dekat wadahnya

2. Panaskan

3. Bahan-bahan yang akan disterilkan dimasukkan. Media yang disterilkan dalam erlenmeyer atau tabung reaksi harus ditutup rapat dengan kapas dan alumunium foil

4. Ukur temperatur sampai 100 0C dan biarkan selama 30-45 menit 

5. Matikan waterbath dan keluarkan bahan. Simpan bahan ditempat yang bersih

6. Lakukan prosedur 4-5 selama 2 hari berturut-turut

D. Metode Aseptik

Metode aseptik untuk memindahkan sel mikroba, tujuannya untuk mengembangkan keterampilan memindahkan kultur secara aseptik.

Bahan yang digunakan yaitu : kultur bakteri, media untuk bakteri, jarum ose, dan lampu bunsen.

1. Cara kerja memindahkan bakteri ke medium agar

a) Beri label medium yang akan diinokulasi (penanaman bakteri atau bisa disebut juga inokulasi adalah pekerjaan memindahkan bakteri dari medium yang lama kemedium yang baru dengan tingkat ketelitian yang sangat tinggi)

b) Goyang tabungkultur untuk mensuspensi bakteri

c) Letekkan kedua tabung pada telapak tangan membentuk V

d) Bakar jarum ose sepanjang jarumnya

e) Buka tutup tabung menggunakan tangan kanan

f) Bakar leher tabung

g) Dinginkan jarum ose dan ambil bakteri

h) Gores permukaan agar miring 

i) Letakkan bakteri pada slide untuk melihat bakteri apa yang dipindahkan 

j) Gores bakteri pada cawan petri

k) Bakar kembali leher tabung

l) Tutup tabung kembali 

m) Bakar jarum ose kembali

2. Cara menyimpan medium dalam cawan petri

a) Tuangkan medium yang telah dibuat kedalam tabung reaksi atau cawan petri 

b) Jika menuangkan kedalam cawan petri dari tabung reaksi atau erlenmeyer jangan lupa bakarlah bibir erlenmeyer atau tabung reaksi

c) Bukalah tutup cawan petri steril dan tuangkan medium kedalam cawan petri yang lain

d) Cawan yang berisih medium tidak boleh terganggu sampai suhu mencapai temperatur kamar dan mediumnya beku

e) Simpan cawan-cawan petri tersebut dalam keadaan terbalik. Posisi cawan petri terbalik agar konsentrasi air yang terdapat menjadi tinggi, sebab selama inkubasi terbentuk air yang mengembun didalam cawan petri. Air akan menetes dari tutup cawan kepermukaan. Hal ini akan menghasilkan suatu masa pertumbuhan yang menganak sungai dan menghancurkan pembentukan koloni secara individu. Untuk menghindari hal ini, maka ketika inkubasi, bagian bawah cawan petri diletakkan diatas atau terbalik.

3. Lemari Asam

Lemari asam sebenarnya lebih berfungsi untuk melindungi praktikum ketika mengerjakan percobaan yang berbahaya. Umumnya akan menggunakan asam pekat yang berpotensi menciprat kebadan praktikum selama percobaan. Selain itu juga untuk melakukan reaksi yang banyak menimbulkan gas, apabila gas yang berbahaya atau menyesakkan napas sebab sebagian atas lemari asam terdapat ventilator yang menyedot udara berbahaya didalamnya akan keluar.

 

 Hasil Pengamatan

Gambar-gambar praktikum

   

Erlenmeyer dan tabung reaksi yang telah diberikan penutup

Tabung reaksi yang telat diberi penutup dan ditutupi dengan kertas yang dimasukkan kedalam autoklaf

 

 Kesimpulan

  Dari praktikum yang kami lakukan kami dapat mengerti bagaimana mensterilkan peralatan laporatorium khususnya pada peralatan yang berbahan kaca.

  Metode pemindahan biakan murni secara aseptik, antara lain :

a. Metode streak atau gores

Penggoresan sempurna akan menghasilkan koloni yang terpisah. Kelemahannya adalah bakteri anaerob tidak dapat tumbuh. Alat yang utama yaitu ose.

b. Metode spread atau sebar dengan Alat utamanya yaitu gelas berbentuk L

c. Metode pour plate atau tuang dengan Alat utama yang digunakan yaitu pipet volume.

  Tujuan pemindahan bakteri ke media adalah untuk merefresh bakteri agar bakteri bereproduksi lebih banyak dan sempurna.

 

PERCOBAAN 3

PROSES FERMENTASI

 Tujuan : mahasiswa mampu mengembangkan keterampilan menggunakan alat-alat berupa tabung fermentasi

 Dasar Teori

Fermentasi adalah proses produksi energi dalam sel dalam keadaan anaerobik (tanpa oksigen). Secara umum, fermentasi adalah salah satu bentuk respirasi anaerobik, akan tetapi, terdapat definisi yang lebih jelas yang mendefinisikan fermentasi sebagai respirasi dalam lingkungan anaerobik dengan tanpa akseptor elektron eksternal.

Gula adalah bahan yang umum dalam fermentasi. Beberapa contoh hasil fermentasi adalah etanol, asam laktat, dan hidrogen. Akan tetapi beberapa komponen lain dapat juga dihasilkan dari fermentasi seperti asam butirat dan aseton. Ragi dikenal sebagai bahan yang umum digunakan dalam fermentasi untuk menghasilkan etanol dalam bir, anggur dan minuman beralkohol lainnya.

Pada beberapa mikroba peristiwa pembebasan energi terlaksana karena asam piruvat diubah menjadi asam asetat + CO2 selanjutaya asam asetat diabah menjadi alkohol.

Dalam fermentasi alkohol, satu molekul glukosa hanya dapat menghasilkan 2 molekul ATP, bandingkan dengan respirasi aerob, satu molekul glukosa mampu menghasilkan 38 molekul ATP.

Reaksinya :

1. Gula (C6H12O6) ——> asam piruvat (glikolisis)

2. Dekarbeksilasi asam piruvat.

Asampiruvat ———> asetaldehid + CO2.

piruvat dekarboksilase (CH3CHO)

3. Asetaldehid oleh alkohol dihidrogenase diubah menjadi alkohol

(etanol).

2 CH3CHO + 2 NADH2 ———> 2 C2HsOH + 2 NAD.

alkohol dehidrogenase (enzim)

Ringkasan reaksi : C6H12O6———> 2 C2H5OH + 2 CO2 + 2 NADH2 + Energi

 Alat dan Bahan :

o Tabung fermentasi

o Sendok pengaduk 

o Breker gelas

o Gelas ukur 

o Mistar atau penggaris

o Ragi

o Air panas dan dingin

o Gula

 

 Cara kerja

1. Siapkan alat dan bahan terlebih dahulu

2. Campurkan ragi, gula dan air hangat dalam breker gelas, aduk hingga homogen

3. Masukkan campuran ragi kedalam tabung fermentasi hingga penuh

4. Amati perubahan yang terjadi selama 30 menit

5. Ukur perubahan penguapan air yang terjadi dengan menggunaan mistar atau penggaris. Catat hasil pengamatan dengan menuangkan air hasil fermentasi kedalam gelas ukur

6. Kadar CO2 yaitu : jarak perubahan buih / waktu

 

 Kesimpulan

Pada percobaan tersebut dapat disimpulkan bahwa fermentasi merupakan reaksi anaerob dan termasuk dalam reaksi eksergonik yang membebaskan energi.

- Asam piruvat ( 3C) diubah menjadi Asetal dehid (2C ) sehingga dilepaskan molekul CO2 (1C)

- Asetaldehide segera mengikat ion H+ dari penguraian NADH menjadi NAD maka sebagai akseptor ion H+ dalam proses fermentasi etanol ini adalah Asetal dehide

- Pengikatan ion H+ oleh Asetaldehide akan membentuk senyawa Etil alkohol ( Etanol),

- Produk fermentasi ini adalah 2 ETANOL , 2 CO2 , 2 ATP ,

- Bahan fermentasi alkohol tetap menggunakan Glukosa , jika bahannya Glukosa anggur maka akan menjadi alkohol

Dari hasil pengamatan yang dilakukan kami mendapatkan hasil pada ragi yang ditambahkan air panas memiliki endapan yang di ukur dengan mistar yaitu 5 cm, sedangkan ragi yang ditambahkan dengan air dingin endapannya yaitu 7 cm.  

PERCOBAAN 4

TERMOMETER DAN PENGENALAN ALAT-ALAT BEDAH HEWAN DILABORATORIUM

 Tujuan : kecepatan bernapas penghirup air dan penghirup udara
 Dasar Teori
Alat bedah adalah alat yang dirancang untuk digunakan untuk kegiatan pembedahan, seperti membedah hewan, manusia, dan sebagainya. Beberapa bagian juga diperlukan dalam pembuatan sediaan botani. Pembedahan pada manusia sudah berkembang pesat sehingga sangat juah berbeda dari jaman dahulu. Saat ini sudah ada alat pembedahan minimal invasif yang dilakukan hanya dengan membuat sayatan kecil pada kulit untuk melakukan tindakan pembedahan,

Alat bedah terdiri dari dompet kulit yang berisi alat-alat sebagai berikut:
- Pinset (yang ujungnya lancip), digunakan untuk mengambil atau menarik bagian alat-alat tubuh dari hewan yang dibedah, memisahkan organ yang satu dengan yang lain. Pinset ada dua jenis, pinset anatomis jika ujung dari pinset tidak mempunyai gigi, disebut juga pinset traumatis, yang ke dua, pinset sirurgis jika ujungnya mempunyai gigi dan disebut pinset atraumatis. Bentuk keseluruhan pinset juga bermacam-macam, ada yang panjang dan kecil, ada pinset Addson jika bentuknya pendek gemuk.
- Tangkai pisau bedah dan daun pisau bedah. Daun pisau bedah dipasang pada tangkai pisau bedah dan digunakan untuk menguliti hewan yang dibedah, memotong bagian-bagian tubuh dan sebagainya. Daun pisau dan tangkai pisau merupakan satu kesatuan. Pisau tersebut ada dua macam, yaitu yang berujung lancip dan yang berujung tak lancip. Model ini dapat diasah, sedang yang lepas umumnya dibuang saja bila sudah tumpul. Saat ini pisau dan gagangnya sudah terpisah dan tidak perlu diasah, sekali paaki langsung dibuang. Untuk gagang ada dua ukuran yakni ukuran atau nomor 3 dan nomor 4. Pisaunya sendiri ada banyak macam bentuk dan masing-masing mempunyai nomor. Umumnya di bidang bedah digunakan mata pisau nomor 11, 15, 21 tergantung tujuannya.
- Gunting bedah (lurus), digunakan untuk menggunting bagian-bagian alat tubuh yang akan diamati, seperti usus, jantung, pembuluh darah dan sebagainya. Umumnya digunakan untuk mengadakan bukaan pertama pada bagian tubuh yang akan diperiksa. Gunting sangat banyak macamnya, ada gunting verband, ada gunting metzembaum untuk menggunting jaringan, gunting Potts untuk pembedahan jantung dan pembuluh darah, gunting benang dengan kedua ujung tajam atau salah satunya yang tajam, ada juga gunting benang dengan salah satu ujung bilah berlekuk.
- Paku bedah bertangkai (berujung lurus), digunakan untuk memakukan (merentang) bagian-bagian alat tubuh pada papan bedah. Juga dapat digunakan untuk memisahkan bagian alat tubuh yang sangat kecil dan halus.
- Jarum bertangkai (ujung bengkok, tumpul), digunakan untuk mengangkat bagian alat-alat tubuh yang terletak di bagian bawah, untuk menelusuri urat atau pembuluh agar tidak rusak.
- "Klem bedah" ada banyak jenis juga. Ada klem pean, klem kocher, "mosquito", klem angel 30, 45, 90 derajat kadang disebut prepaperen klem, klem pembuluh darah yang bersifat atraumatis untuk pembuluh darah.
Alat pendukung dalam pembedahan yaitu:
Panci atau papan bedah adalah panci atau papan untuk tempat pembedahan setelah diisi dengan lilin atau telenan bedah dari gabus. Panci bedah terbuat dari aluminuium dengan panjang kurang lebih 25 cm, lebar 20 cm dan dalam 5 cm. Papan bedah terbuat dari kayu. Papan ini tersedia dalam dua ukuran yaitu 25 cm x 20 cm x 5 cm dan 50 cm x 40 cm x 5 cm.
Pendahuluan
Insang ikan menghirup oksigen dari air seperti paru-paru manusia yang menghirup oksigen dari udara. Kandungan oksigen udara sekitar 20 kali lebih banyak dari pada air yang diperkaya dengan oksigen. Oleh karena itu untuk bernapas, organisme air seperti ikan menghabiskan energi sekitar 20 kali lebih banyak dari pada hewan-hewan penghirup udara.
Gambar morfologi dan anatomi pada ikan

 
 Alat dan Bahan

a. Peralatan bedah
b. Baskom/panci
c. Mangkok kaca yang besar
d. Stoples
e. Termometer
f. Ikan
g. Batu es
h. Air



 Cara kerja
Cara kerja 1
1. Siapkan tangki penguji dengan mengisi stoples dengan air hingga separuh penuh
2. Amati anatomi luar ikan dan catat kenampakkannya dan identifikasi
3. Tunggu selama 5 menit untuk membiarkan ikan menjadi tenang setelah pemindahan. Jangan berisik dan jangan bergerak selama kamu melakukan percobaan
4. Cari mulut ikan dan penutup insangnya
5. Hitung berapa kali ikan menutup dan membuka mulut serta insangnya selama 2 menit
6. Aturlah pengatur waktu dan mintahlah temanmu untuk membantu mengukur waktu selama percobaan. Ulangi proses perhitungan sebanyak 2 kali
7. Buatlah rata-rata pengamatan dan kemudian bagilah dengan 2 untuk menentukan rata-rata kecepatan bernapas (jumlah pembukaan mulut/operculum) selama 1 menit. Waktu pengamatan selama 2 menit digunakan karena untuk menghindari besarnya perbedaan perhitungan bila mengukur dengan waktu singkat
8. Setelah didapati waktunya, maka kita coba menggunakan alat bedah untuk melihat anatomi ikan
Cara kerja 2
1. Masukkan ikan yang ada kedalam stoples uji, letakkan termometer ke dalam stoples dengan selang 2 sampai 5 0C dengan menambahkan potongan es batu
2. Dengan pelan-pelan aduk air didalam stoples setiap kali menambah es batu untuk menunggu selama 5 menit agar ikan menyesuaikan dengan suhu yang baru
3. Hitung berapa kali ikan membuka dan menutup mulutnya selama 2 menit dan dibagi 2 untuk menghitung kecepatan bernapas selama 1 menit
4. Teruskan menurunkan suhu sampai mencapai 5 0C
5. Ulangi percobaan untuk tiap-tiap ikan
Cara kerja 3
1. Pilihlah orang yang akan diuji
2. Hitung berapa kali orang tersebut bernapas selama 2 menit
3. Ulangi percobaan menghitung 2 kali
4. Hitung rata-rata perhitungan dan dibagi dengan 2 untuk menghitung pernapasan selama 1 menit

Pertanyaan :
1) Bagaimana  suhu mempengaruhi kecepatan bernapas ikan?
2) Bagaimana kecepatan bernapas ikan bila dibandingkan makhluk yang menghirup udara seperti manusia?

Jawaban :
1) Suhu dapat mempengaruhi kecepatan bernapas pada ikan karena Pada suhu meningkat maka ikan akan membutuhan oksigen lebih. Ikan bereaksi untuk temperature dengan meningkatkan volume pernafasan, meningkat output dari jantung (volume dan laju detak jantung) dan mengurangi resistensi dalam sistem vaskular. Ini meningkatkan aliran darah dalam insang. Faktor pembatas menjadi laju respirasi, aliran darah ke insang, dan tingkat difusi oksigen atas insang.
2) Kecepatan bernapas ikan dengan manusia sangat berbeda yang kita ketahui Ikan bernapas pada insang yang terdapat di sisi kanan dan kiri kepala (kecuali ikan Dipnoi yang bernapas dengan paru-paru). Selain berfungsi sebagai alat pernapasan, insang juga berfungsi sebagai alat ekskresi dan transportasi garam-garam. Oksigen dalam air akan berdifusi ke dalam sel-sel insang. Darah di dalam pembuluh darah pada insang mengikat oksigen dan membawanya beredar ke seluruh jaringan tubuh, darah akan melepaskan dan mengikat karbondioksida serta membawanya ke insang. Dari insang, karbondioksida keluar dari tubuh ke air secara difusi. Pada beberapa jenis ikan, rongga insangnya meluas membentuk lipatan tidak teratur yang disebut labirin. Rongga labirin berguna untuk menyimpan udara sehingga ikan tersebut dapat hidup di lingkungan yang kurang oksigen. Sedangkan Manusia membutuhkan suply oksigen secara terus-menerus untuk proses respirasi sel, dan membuang kelebihan karbondioksida sebagai limbah beracun produk dari proses tersebut.
Pertukatan gas antara oksigen dengan karbondioksida dilakukan agar proses respirasi sel terus berlangsung. Oksigen yang dibutuhkan untuk proses respirasi sel ini berasal dari atmosfer, yang menyediakan kandungan gas oksigen sebanyak 21% dari seluruh gas yang ada. Oksigen masuk kedalam tubuh melalui perantaraan alat pernapasan yang berada di luar. Pada manusia, alveolus yang terdapat di paru-paru berfungsi sebagai permukaan untuk tempat pertukaran gas.
 Hasil pengamatan
Perhitungan pernapasan dalam waktu permenit pada ikan
1) Percobaan pertama
Menit ke-1 (110 kali) Menit ke-2 (101 kali)
M1 + M2 = 110 + 101 = 221 = 105,5
      2  2      2
2) Percobaan kedua
Menit ke-1 (30 kali) Menit ke-2 (18 kali) dalam suhu 290C
M1 + M2 = 30 + 18 = 48 = 24
       2 2 2
3) Percobaan ketiga
Menit ke-1 (18 kali) Menit ke-2 (21 kali)
M1 + M2 = 18 + 21 = 39 = 19,5
      2  2  2



 
 Kesimpulan
Berdasarkan hasil pengamatan, diperoleh bahwa Ikan mas (Cyprinus carpio, L.) merupakan salah satu jenis ikan air tawar yang termasuk dalam golongan Teleostei.Tubuhnya terbungkus oleh kulit yang bersisik, berenang dengan menggunakan sirip dan bernafas dengan insang. Dimana tubuh ikan mas agak memanjang dan memipih tegak. Mulut terletak diujung tengah (terminal) dan dapat disembulkan (proktaktil), bagian anterior mulut terdapat dua pasang sungut. Secara umum, hampir seluruh tubuh ikan mas ditutupi oleh sisik. Hanya sebagian kecil saja tubuhnya yang tidak tertutup oleh sisik. Sisik ikan mas berukuran relatif besar dan digolongkan dalam sisik tipe sikloid. Selain itu, tubuh ikan mas juga dilengkapi dengan sirip.
Organ-organ pada ikan mas yakni bagian kepala. Bagian dari ujung mulut terdepan hingga  ujung operkulum (tutup insang) paling belakang. Adapun organ yang terdapat pada bagian kepala ini antara lain adalah mulut, rahang, gigi, sungut, cekung hidung, mata, insang, operkulum, otak, jantung, dan pada beberapa ikan terdapat alat pernapasan tambahan, dan sebagainya. Bagian badan yakni dari ujung operkulum (tutup insang) paling belakang sampai pangkal awal sirip belang atau sering dikenal dengan istilah sirip dubur. Organ yang terdapat pada bagian ini antara lain adalah sirip punggung, sirip dada, sirip perut, hati, limpa, empedu, lambung, usus, ginjal, gonad, gelembung renang, dan sebagainya.
Sistem respirasi pada ikan dan burung berbeda dengan sistem respirasi pada manusia. Jika pada manusia alat-alat respirasinya terdiri dari Rongga Hidung → Faring Laring → Trakea → Paru-paru → Bronkus dan Bronkiolus → berakhir di Alveolus. Insang pada ikan tersusun dari Tutup insang (operculum), Membrane brankiostega (selaput tipis di tepi operculum), Lengkung insang (arkus brankialis), Tulang tapis insang, Daun insang, Lembaran (filamen) insang (holobran kialis), dan Saringan insang (tapis insang). Sedangkan pada ikan alat-alat respirasinya hanya tersusun atas ingsang yang berada pada sisi kiri dan kanan kepalanya. Pada burung alat-alat respirasinya terdiri dari Rongga Hidung → Celah Tekak → Trakea → Siring → Bifurkasi Trakea → Bronkus → berakhir di Paru-paru.
Hubungan dari peningkatan frekuensi nafas dan frekuensi denyut nadi bahwa semakin banyak aktivitas tubuh maka semakin meningkat frekuensi denyut nadi dan frekuensi bernafas.
Selain itu, juga terjadi perbedaan antara frekuensi denyut nadi dan nafas antara olahragawan dengan bukan olahragawan. Dan kegiatan bernafas itu merupakan kegiatan yang harus dilakukan oleh tubuh kita, karena jika kita melakukan bernafas selang beberapa menit, maka akan terjadi gangguan pada organ kita.
 

PERCOBAAN 5

VEGETASI ATAU STUDI KOMUNITAS

 Tujuan : untuk mengetahui, kerapatan dan kerimbunan, dan frekuensi serta memahami pentingnya faktor-faktor tersebut dalam studi komunitas.
 Dasar teori
Berbagai spesies tanaman dalam suatu komunitas terdapat dalam jumlah yang tidak sama. Berdasarkan produktivitas atau biomassa, seringkali dijumpai ada beberapa spesies tanaman yang dominan. Pada komunitas yang kopleks pola yang umum adalah beberapa spesies yang nyata dominan, banyak yang setengah dominan dan sedikit yang tidak dominan (Soekartomo, Soemitro dan Heddy, 1989; 83. Pengantar ekologi).
Suatu komposisi suatu komunitas ditentukan oleh seleksi tumbuhan dan hewan yang kebetulan mencapai dan mampu hidup ditempat tersebut dalam kegiatan anggota-anggota komunitas ini bergantung pada penyesuaian dari setiap individu terhadapfaktor-faktor fisik dan biologi yang ada ditempat tersebut (Soedjiran, R.1988. Pengantar Ekologi).
Makhluk hidup dari berbagai jenis yang hidup secara alami di suatu tempat membentuk kumpulan yang di dalamnya setiap individu menemukan lingkungan yang dapat memenuhi kebutuhan hidupnya. Kelompok yang hidup secara bersama telah menyesuaikan diri dan menghuni suatu tempat alami disebut komunitas.  Karakteristik komunitas pada suatu lingkungan adalah keanekaragaman. Makin beranekaragam komponen biotik (biodiversitas), maka makin tinggi keanekaragaman. Sebaliknya makin kurang beranekaragaman maka dikatakan keanekaragaman rendah (Riberu, Paskalis 2002. Jurnal Pembelajaran Ekologi : 7).
Analisis komunitas tumbuhan merupakan suatu cara mempelajari susunan atau komposisi jenis dan bentuk atau struktur vegetasi. Tujuan yang ingin dicapai dalam analisis komunitas adalah unutk mengetahui komposisi spesies dan struktur komunitas pada suatu wilayah yang dipelajari. Bentuk pertumbuhan adalah penggolongan tetumbuhan menurut bentuk pertumbuhannya, habitat, atau menurut karakteristik lainnya. Bentuk pertumbuhan yang umum dan mudah disebut misalnya pohon, semak, perdu, herba, dan liana (Indriyanto, 2010).
Hasil analisis komunitas tumbuhan disajikan secara deskripsi mengenai komposisi spesies dan struktur komunitasnya. Struktur komunitasnya tidak hanya dipengaruhi oleh hubungan antar spesies, tetapi juga oleh jumlah individu dari setiap spesies  organisme. Hal yang demikian itu menyebabkan kelimpahan relatif suatu spesies dapat memengaruhi fungsi suatu komunitas , bahkan dapat memeberikan pengaruh pada keseimbagan sistem dan akhinya  berpengaruh pada keseimbangan sistem dan akhirnya berpengsruhi pada stabilitas komunitas (Soegianto, 1994).
Indeks dominansi  (index of dominance) adalah parameter yang menyatakan tingkat terpusatnya dominansi (penguasaan) spesies dalam suatu komunitas. Keanekaragaman  spesies merupakan cirri tingkatan komunitas berdasarkan organisasi biologinya. Keanekaragaman spesies dapat digunakan untuk menyatakan struktur komunitas dan mengukur stabilitas komunitas, yaitu kemampuan suatu komunitas untuk menjaga dirinya tetap stabil meskipun ada gangguan terhadap komponen-komponennya (Soegianto, 1994).
Vegetasi pembentuk hutan merupakan komponen alam yang mampu mengendalikan iklim melalui pengendalian fluktuasi atau perubahan unsur-unsur  iklik yang ada di sekitarnya, misalnya temperatur, kelembapan, angin, dan curah hujan, serta menetukan kondisi iklim setempat  dan iklim makro. Sebaliknya, unsur-unsur iklim tersebut adalah komponen alam yang memengaruhi kehidupan (Indriyanto, 2010).
Di dalam ekologi, frekuensi dipergunakan untuk menyatakan proporsi antara jumlah sampel yang berisi sutau spesies tertentu terhadap jumlah total sampel. Frekuensi spesies tumbuhan adalah jumlah petak contoh tempat diketemukannya suatu spesies dari sejumlah petak contoh yang dibuat. Frekuensi merupakan besarnya intennsitas diketemukannya suatu spesies organisme dalam pengamatan keberadaan organisme pada komunitas atau ekosistem.
Indeks dominansi  (index of dominance) adalah parameter yang menyatakan tingkat terpusatnya dominansi (penguasaan) spesies dalam suatu komunitas. Keanekaragaman  spesies merupakan ciri tingkatan komunitas berdasarkan organisasi biologinya. Keanekaragaman spesies dapat digunakan untuk menyatakan struktur komunitas dan mengukur stabilitas komunitas, yaitu kemampuan suatu komunitas untuk menjaga dirinya tetap stabil meskipun ada gangguan terhadap komponen-komponennya (Soegianto, 1994).
Indeks nilai penting (importance value index) adalah parameter kuantitatif yang dapat dipakai untuk untuk menyatakan tingkat dominansi (tingkat penguasaan) spesies-spesies dalam  suatu komunitas tumbuhan sehingga spesies yang paling dominan tentu saja memiliki indeks nilai penting yang paling besar (Soegianto, 1994).
Sebuah indeks yang disebut indeks nilai penting (INP) sebagai jumlah dari kerapatan relatif, frekuensi relatif, dan luas penutupan relatif. Dengan demikian, indeks nilai penting (INP) dan indeks nilai penting untuk spesies ke-I (INP-i) dapat dituliskan dengan rumus (Gopal dan Bhardwaj, 1979) sebagai berikut:
INP = KR + FR + CR
INP-I = KR-I + FR-I + CR-i
Metode petak merupakan prosedur merupakan prosedur yang paling umum digunakan untuk pengambilan contoh berbagai tipe organisme termasuk komunitas tumbuhan. Petak yang digunakan dapat berbentuk segi empat, persegi, atau lingkaran. Di samping itu, untuk kepentingan analisis komunitas tumbuhan dapat digunakan petak tunggal atau petak ganda. Metode jalur merupakan metode yang paling efektif untuk mempelajari perubahan keadaan vegetasi menurut kondisi tanah, topografi, elevasi. Jalur-jalur contoh dibuat memotong garis kontur (garis tinggi/garis topografi) dan sejajar satu dengan yang lainnya. Sedangkan metode garis berpetak dianggap sebagai modifikasi dari metode petak ganda atau metode jalur, yaitu dengan cara melompati satu atau lebih petak-petak dalam jalur, sehingga sepanjang garis rintis terdapat petak-petak pada jarak tertentu yang sama. Untuk metode kombinasi yang dimaksudkan adalah kombinasi antara metode jalur dan garis berpetak (Indriyanto, 2010).
Metode transek pada umumnya dipakai untuk jenis vegetasi tertentu misalnya padang rumput, semak atau tumbuhan perdu lainnya. Penggunaan metode petak/plot seringkali kurang praktis dan membutuhkan bayak waktu. Untuk mengatasi masalah tersebut maka dapat digunakan 3 macam metode transek (Umar, 2013) yaitu sebagai berikut :
1.    Line Transect
    umumnya untuk komunitas padang rumput. Tentukan dua titik sebagai pusat garis transek, panjang garis transek biasanya 10,25,50,100 m, tebal garis transek 1 cm. Pada garis transek dibuat segmen dengan panjang 1, 5, 10 meter
2.    Belt Transect
     umumnya digunakan untuk mempelajari komunitas hutan yang luasnya, serta keadaannya belum diketahui. Lebar transek 10-20 m dan jarak antar transek 200-1000 m tergantung intensitas Padak transek dibuat petak dengan ukuran tertentu misalnya 10x10 m atau 20x20 m.
3.    Strip Sensus
 
 Alat dan Bahan
• Alat : Alat yang digunakan dalam percobaan ini antara lain, alat tulis menulis, meteran, tali rapiah, dan patok(ranting pohon) ukuran 1 m dan alat ukur Ph tanah (soil Ph meter).
• Bahan : Bahan yang digunakan dalam percobaan ini adalah areal yang akan diamati (areal komunitas tumbuhan) yang ukurannya 1x1 meter.

 Cara kerja
1. Dipilih areal yang akan digunakan dalam percobaan yang akan menentukan  keanekaragaman jenis tumbuhan.
2. Hitung Ph tanah dengan menggunakan alat
3. Buat petak sampel (plot) 1x1 m dalam areal tersebut dan bagi lagi dalam satu plot menjadi  subplot yang ukurannya 20 cm, sehingga dalam satu plot terdapat 25 subplot.
4. Lakukan perhitungan jumlah individu (rumput) pada setiap petak sampel (subplot).
5. Buat tabel hasil pengamatan/perhitungan jenis tersebut dan dianalisis.
6. Kemudian buat lagi plot yang kedua seperti plot yang pertama, agar didapat perbandingan komunitas pada tumbuhan.

 Hasil pengamatan
I. Kerapatan relatif = banyaknya jumlah jenis tanaman x 100 %
     Total jumlah tanaman semua flot
Plot 1 terdapat tanaman
Tanaman A
Rumput daun panjang Tanaman B
Rumput daun bergerigi Tanaman C
Rumput berdaun membulat
21 1 3
16 3 6
14 0 8
16 2 7
13 2 13
20 3 6
9 3 5
7 2 6
15 1 5
22 5 3
16 3 5
10 2 6
14 5 3
17 4 6
12 3 4
15 7 3
11 4 1
14 3 2
10 4 2
9 8 1
21 4 1
8 3 1
14 2 2
24 4 3
22 2 1

Plot 2 terdapat tanaman
Tanaman A
Rumput daun panjang Tanaman B
Rumput daun bergerigi Tanaman C
Rumput berdaun membulat
15 3 3
17 3 2
16 0 15
10 2 17
5 0 20
3 0 11
7 2 15
5 2 8
20 0 5
10 0 10
3 0 22
3 0 10
5 0 8
20 0 3
21 0 5
2 0 15
13 3 5
15 0 15
30 0 3
18 1 2
11 3 5
23 8 1
9 2 12
25 0 7
27 0 10

Total plot
Tanaman Plot 1 Plot 2 Total
Tanaman A 370 318 688
Tanaman B 80 29 109
Tanaman C 103 229 332
Total 553 576 1129

Kerapatan relatif = Banyaknya jumlah jenis tanaman  x 100 %
       Total jumlah tanaman semua flot
Tanaman A
Plot 1 (KR) = 370/688 x 100% = 53,7%
Plot 2 (KR) = 318/688 x 100% = 46,2%
Total tanaman A = total plot 1 + total plot 2 = 53,7+46,2 = 99,9 = 49,9
2 2 2
Tanaman B
Plot 1 (KR) = 80/109 x 100% = 73,3%
Plot 2 (KR) = 29/109 x 100% = 26,6%
Total tanaman B = 73,3 + 26,6 = 99,9 = 49,9
2        2
Tanaman C
Plot 1 (KR) = 103/332 x 100% = 31,0%
Plot 2 (KR) = 229/332 x 100% = 68,9%
Total tanaman B = 31,0 + 68,9 = 99,9 = 49,9
2        2
Total keseluruhan = total A + total B + total C = 49,9 + 49,9 + 49,9 = 149,8
% penutup = 1449,8 + 100 = 249,8 %

II. Kerimbunan = % semua plot x 100%
% penutup
Total tanaman A x 100%
    % penutup
Tanaman A =   49,9  x 100% = 19,99%
249,8
Tanaman B =   49,9  x 100% = 19,99%
249,8
Tanaman C =   49,9  x 100% = 19,99%
249,8
Total kesekuruhan = 59,97

III. Frekuensi (FR)

Tanaman A
Plot 1 = 370/553 x 100% = 66,90
Plot 2 = 318/576 x 100% = 55,20
Total = 66,90 + 55,20 = 122,10 = 61,05
   2 2
Tanaman B
Plot 1 = 80/553 x 100% = 14,46
Plot 2 = 29/576 x 100% = 5,03
Total = 14,46 + 5,03 = 19,49 = 9,74
   2 2
Tanaman A
Plot 1 = 103/553 x 100% = 18,62
Plot 2 = 229/576 x 100% = 39,75
Total = 18,62 + 39,75 = 58,37 = 29,18
   2 2
Total keseluruhan = total tan A + total tan B + total tan C
= 61,05 + 9,74 + 29,18
= 99,97

IV. Nilai penting = kerapatan relatif (KR) + kerimbunan relatif (KR) +(FR)
3
= 149,8 + 59,97 + 99,97
3
= 309,74
3
= 103,24

 
 Kesimpulan
Dari praktikum yang kami lakukan dalam studi komunitas yang dilakukan di perkarangan depan laporatorium, terdapat banyak tanaman dari dalam setiap plot yang jumlahnya berbeda-bedah, sehingga dapat dilihat kerapatan suatu tumbuhan. 

PERCOBAAN 6

PITFALL TRAP (PERANGKAP JEBAK)

 Tujuan : untuk mengetahui kelimpahan hewan-hewan yang hidup di permukaan tanah.
 Dasar teori
Tidak semua hewan dalam suatu komunitas biotik individu populasinya dapat dihitung atau kerapatan populasinya dapat diukur. Dalam hal ini pengetahuan mengenai kelimpahan dalam kerapatan relatif sudah cukup, meskipun besar populasi yang sebenarnya tidak kita ketahui namun gambaran mengenai kelimpahan populasi yang berupa suatu indeks sudah dapat memberikan informasi mengenai banyak hal. Misalnya mengenai berubah-ubahnya populasi hewan di suatu area pada waktu yang berbeda atau berbeda-bedanya populasi-populasi hewan pada area atau komunitas yang berbeda. Teknik dan penentuan indeks kelimpahan itu banyak sekali macamnya tergantung dari spesies hewan berikut kekhasan prilakunya serta macam habitat yang ditempatinya. Salah satu metode yang akan digunakan dalam praktikum ini adalah Metode Perangkap Jebak (Pitfall trap). Perangkap jebak itu berupa tabung atau bejana tinggi sedarhana yang dibenamkan dalam tanah, hingga mulut tabung itu rata dengan permukaan tanah maupun serasah yang menutupinya.
Hewan tanah adalah hewan yang hidup di tanah, baik yang hidup di permukaan tanah maupun yang hidup di dalam tanah. Tanah itu sendiri adalah suatatu bentangan alam yang tersusun dari bahan-bahan mineral yang merupakan hasil proses pelapukan batu-batuan dan bahan organic yang terdiri dari organisme tanah dan hasil pelapukan sisa tumbuhan dan hewan lainnya. Jelaslah bahwa hewan tanah merupakan bagian dari ekosistem tanah. Dengan denikian, kehidupan hewan tanah sangatdi tentukan oleh faktor fisika-kimia tanah, karena itu dalam mempelajari ekologi hewan tanah faktor fisika-kimia tanah selalu diukur.
Pengukuran faktor fisika-kimia tanah dapat di lakukan langsung di lapangan dan ada pula yang hanya dapat diukur di laboraturium. Untuk pengukuran faktor fisika-kimia tanah di laboraturium maka di lakukan pengambilan contoh tanah dan dibawa ke laboraturium.
Dilapangan hewan tanah juga dapat dikumpulkan dengan cara memasang perangkap jebak (pit fall-trap). Pengumpulan hewan permukaan tanah dengan memasang perangkap jebak juga tergolong pada pengumpulan hewan tanah secara dinamik.
Perangkap jebak sangat sederhana, yang mana hanya berupa bejana yang ditanam di tanah. Agar air hujan tidak masuk ke dalam perangkap maka perangkap diberi atap dan agar air yang mengalir di permukaan tanah tidak masuk ke dalam perangkap maka perangkap dipasang pada tanah yang datar dan agak sedikit tinggi. Jarak antar perangkap sebaliknya minimal 5 m.
Pada perangkap tanpa umpan, hewan tanah yang berkeliaran di permukaan tanah akan jatuh terjebak, yaitu hewan tanah yang kebetulan menuju ke perangkap itu, sedangkan perangkap dengan umpan, hewan yang terperangkap adalah hewan yang tertarik oleh bau umpan yang diletakkan di dalam perangkap, hewan yang  jatuh dalam perangkap akan terawat oleh formalin atau zat kimia lainnya yang diletakkan dalam perangkap tersebut
Kelompok hewan tanah sangat banyak dan beranekaragam, mulai dari protozoa, Nematoda, anaelida, mollusca, arthropoda hingga vertebrata. Hewan tanah dapat pula di kelompokkan atas dasar ukuran tubuhnya, kehadirannya di tanah, habitat yang dipilihnya, dan kegiatan makannya. Berdasarkan ukuran tubuhnya hewan-hewan tersebut dikelompokkan atas mikrofauna, mesofauna, dan makrofauna. Ukuran mikrofauna berkisar antara 20 mikron sampai dengan 200 mikron, mesofauna antara 200 mikron sampai dengan 1 cm, dan makrofauna > 1 cm ukurannya. Berdasarkan kehadirannya, hewan tanah dibagi atas kelompok transien, temporer, penodik, dan permanen. Berdasarkan habitatnya hewan tanah ada yang digolongkan sebagai epigon, hemiedafon, dan eudafon. Hewan epigon hidup pada lapisan tumbuh-tumbuhan di permukaan tanah, hemiedafon hidup pada lapisan organik tanah, dan eudafon hidup pada tanah lapisan mineral. Berdasarkan kegiatan makannya hewan tanah itu ada yang bersifat herbivora, dapravora, fungivora dan predator.
Perangkap jebak pada prinsipnya ada dua macam, yaitu perangkap jebak tanpa  umpan penarik, dan perangkap dengan umpan.


 Alat dan bahan
 Seng / triplek
 Paku
 Palu
 Kayu
 Potol selai
 Kuas lukis
 Pipet tetes
 Cawan petri
 Gelas ukur
 Formalin / alkohol
 Susu cair
 
 Cara kerja
1. Dimasukkan 50 ml formalin atau alkohol kedalam botol selai. Perangkap di pasang secara acak pada lahan dengan vegetasi yang berbeda. Diletakkan umpan seperti susu, gula di sekitar atas botol selai untuk pengamatan hewan yang pakai umpan.
2. Dibuat lubang pada tanah sama besar dengan ukuran botol selai, di usahakan batas atas bibir botol sama datar dengan tanah. Kemudian dipasang atap seng dengan cara menangcapkan pada permukaan tanah dimana jarak atap seng dengan permukaan tanah 15 cm.
3. Kemudian dibuat parit disekitar petakan lubang yang tujuannya agar air tidak masuk kedalam botol selai tersebut.
4. Perangkap jebak tersebut dibiarkan selama 3 hari. Setelah itu sampel dibawah ke laboratorium untuk diidentifikasi

o Gelas tanpa umpan (alkohol) = semut besar 3 ekor, dan kupu-kupu kecil 1 ekor.
o Gelas dengan umpan (alkohol+susu) = semut kecil 40 ekor, semut besar 5 ekor, dan kupu-kupu kecil 1 ekor.
b. Perangkap jebak yang tidak ditanam
o Gelas dengan umpan (alkohol+susu) = semut kecil 30 ekor, dan semut besar 6 ekor.
o Gelas tanpa umpan (alkohol) = semut kecil 30 ekor, dan semut besar 6 ekor.
Tabel
No Hewan Jumlah
Tanpa umpan Umpan
Gelas yang ditanam
1 Semut besar 3 ekor 40 ekor
2 Semut kecil 1 ekor 5 ekor
3 Kupu-kupu - 1 ekor
Gelas yang tidak ditanam
1 Semut besar 30 ekor 30 ekor
2 Semut kecil 6 ekor 6 ekor
3 Kupu-kupu - -

 
 Kesimpulan
Dari praktikum yang kami lakukan kami mendapatkan hasil yang berbeda antara perangkap jebak yang ditanam maupun tidak ditanam dan yang diberikan umpan dengan yang tidak diberikan umpan. Gelas yang ditanam dan diberikan umpan terdapat banyak hewan yang terjebak dibandingkan dengan gelas yang tidak ditanam dan tidak diberikan umpan.
 




DAFTAR PUSTAKA

  Buku bahan ajar mata kuliah perkakas pendukung II
  Hand out praktikum perkakas pendukung II
  Gopal, B. dan N. Bhardwaj, 1979. Element Of Ecology. Department Of Botany. Rajasthan University Jaipur, India.

  Indriyanto, 2010. Ekologi Hutan. Bumi Aksara, Jakarta.

  Soegianto, A., 1994. Ekologi Kuantitatif:Metode Analisis Populasi dan Komunitas. Penerbit Usaha Nasional, Jakarta.

  Umar, Muhammad Ruslan, 2013. Ekologi Umum Dalam Praktikum. Jurusan Biologi. Universitas Hasanuddin, Makassar.